Jual bibit Nata De Coco dan Konsultasi Produksi Nata De Coco

087731375234 

Di masa pandemic seperti ini, kondisi ekonomi masyarakat kita banyak yang terpuruk akibat PHK bagi karyawan, dan pasar yang  semakin merosot tajam bagi pelaku usaha. Hal ini menjadi semakin merosotnya daya beli masyarakat kita. Namun, hendaklah kita tetap optimis, masih banyak yang bisa kita lakukan diantarana memulai wirausaha secara kecil-kecilan dengan modal yang pas-pasan dan alat yang relative sederhana. Diantara peluang usaha yang cukup prospektif dan modalnya tidak terlalu besar adalah bisnis nata de coco-yaitu dengan memanfaatkan limbah air kelapa menjadi produk bernilai ekonomis.

Di Indonesia, nata de coco biasa disebut sari kelapa dan mulai dikenalkan pada tahun 1973 dan populer di pasaran pada tahun 1981. Nata de coco pertama kali berasal dari Filipina. Kata nata berasal dari bahasa Spanyol yang berarti krim, sedangkan dalam bahasa Latin disebut natare berarti terapung.  Di pasaran, telah banyak beredar produk nata de coco disajikan dalam kemasan gelas plastik dicampur sirop dengan aneka rasa. Selain itu, nata de coco biasanya juga menjadi campuran minuman cocktail. Di Indonesia, produk nata de coco amat digemari karena rasanya yang nikmat menyegarkan dan menyehatkan juga karena kandungan seratnya yang tinggi dan rendah kalori. 

Produk minuman siap saji nata de coco memiliki pangsa pasar yang besar dan persaingan yang cukup ketat. Permintaan produk nata de coco cukup tinggi disebabkan produk ini memiliki cita rasa yang nikmat dan kaya serat sehingga baik untuk kesehatan serta cocok bagi konsumen yang sedang melakukan diet. Karena itu, nata de coco memiliki pangsa pasar yang luas baik dalam negeri maupun luar negeri, dari anak-anak sampai orang dewasa. Nata de coco saat ini sudah semakin familier digunakan untuk berbagai makanan kecil antara lain puding, cocktail, manisan, es campur, dan lain-lain. Di pasar domestik, permintaan nata de coco biasanya meningkat tajam pada saat menjelang hari raya Lebaran, Tahun Baru, Natal, dan acara-acara penting lainnya. Banyaknya permintaan pada waktu-waktu tersebut menyebabkan banyak rumah tangga yang membuat usaha musiman nata de coco. Di bulan puasa, di kota-kota seluruh Indonesia banyak para pedagang kolak, es buah, cocktail, yang menggunakan bahan nata sebagai bahan campuran.

Permintaan produk minuman nata de coco meningkat dari tahun ke tahun. Hal ini mendorong meningkatnya kebutuhan akan bahan baku nata de coco. Kebutuhan bahan baku nata de coco oleh industri besar mendorong para petani nata de coco meningkatkan produksinya. Hal ini juga berpengaruh meningkatnya kebutuhan bahan baku air kelapa. Permintaan industri minuman nata de coco masih terbilang tinggi dan sebagian belum terpenuh.Untuk memenuhi kebutuhan bahan baku nata, industri minuman banyak bermitra dengan petani nata de coco.

          Bibit Nata De Coco

Bagi yang tertarik wirausaha nata de coco bisa hubungi 087731375234, bisa konsultasi.

Selamat berwirausaha...!

Peluang Bisnis Oncom Merah-Makanan Khas Indonesia

  

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Jual Ragi Oncom Merah

087731375234

 

 

Siapa yang tidak kenal oncom?. Makanan khas Indoneisa yang satu ini cukup unik dan cita rasanya pun juga khas. Oncom awalnya lebih populer di Jawa Barat. Kini oncom kian populer. Berbagai aneka olahan oncom  menjadi menu yang khas yang seringkali membuat kita rindu untuk menikmatinya disaat kita berada di suatu temat yang jauh. Kini, aneka olahan oncom menjadi semakin popular di Indonesia, bahkan di negara lain pun sudah mulai tertarik untuk produksi oncom seperti di Hongkong, Taiwan, USA, Jepang, Australia, dan lain-lain. Umumnya produsen oncom di luar negeri adalah para warga negara Indonesia yang sudah menetap di luar negeri. Beberapa olahan oncom antara lain; keripik oncom, oseng-oseng lenca-oncom, pepes oncom, dan aneka masakan lainya. Di Indonesia dikenal oncom merah dan oncom hitam. Oncom merah merupakan produk hasil fermentasi dengan menggunakan kapang Neurospora sitophila atau N. intermedia sedangkan oncom hitam berasal dari jenis kapang tempe Rhizopus oligosporus dan atau jenis-jenis Mucor. Namun, pada umumnya oncom merah lebih popular dan lebih diminati oleh masyarakat karena cita rasa dan aromanya lebih nikmat. Seiring berkembangnya peminat oncom merah, maka menjadi peluang yang sangat menjanjikan untuk memproduksi oncom merah maupun produk olahannya.

Oncom merah umumnya dibuat dari ampas tahu, yaitu kedelai yang telah diambil proteinnya dalam pembuatan tahu, sedangkan oncom hitam umumnya dibuat dari bungkil kacang tanah yang kadangkala dicampur ampas (onggok) singkong atau tepung singkong (tapioka), agar mempunyai tekstur yang lebih baik dan lebih lunak. Bungkil kacang tanah adalah ampas yang berasal dari kacang tanah yang telah diambil minyaknya dengan proses pemerasan mekanis atau proses ekstraksi. Walaupun kedua bahan substrat tersebut berupa limbah, kandungan gizinya sesungguhnya masih cukup tinggi untuk dapat dimanfaatkan manusia.

            Kapang oncom mengeluarkan enzim amilase, lipase dan protease yang aktif selama proses fermentasi dan memegang peranan penting dalam penguraian pati menjadi gula, penguraian bahan-bahan dinding sel kacang, penguraian lemak, serta pembentukan sedikit alkohol dan berbagai ester yang memunculkan aroma sedap dan harum. Protein juga terdegradasi namun tidak penuh dan berakibat meningkatnya daya cerna.

Proses pembuatan oncom dari bungkil kacang tanah, pertama-tama direndam dalam air bersih selama 3-4 jam, setelah itu ditiriskan, diayak, dan kemudian dicampur dengan tepung tapioka. Selanjutnya, campuran ini dikukus. Setelah masak, adonan diratakan di atas tatakan dari bambu, dan ditaburi dengan ragi setelah dingin. Inkubasi dilakukan setelah ditutup dengan daun pisang bersih dalam suhu ruang yang hangat (25-30 °C) dan kelembaban tinggi, selama 2 sampai 3 hari. Oncom juga bias dibuat dengan menggunakan ampas tahu. Caranya adalah langkah pertama ampas tahu yang masih basah dicuci terlebih dahulu, kemudian diperas dengan menggunakan kain saring, kemudian dikukus hingga tanak, kemudian ditiriskan hingga dingin kurang lebih 5 menit, kemudian dipress dengan alat cetakan dari kayu dengan ukurang menyesuaikan, letakan di wadah berupa nampan plastik atau bamboo,setelah itu ditaburi ragi oncom merah, letakan di rak-rak, dan sebaiknya ditutup dengan kertas yang bersih agar pertumbuhan lebih optimal dan mengurangi kontaminasi jamur lain.

Oncom memiliki kandungan gizi yang cukup tinggi dan dapat menjadi sumber alternatif pemenuhan gizi masyarakat karena harganya yang murah. Kandungan karbohidrat dan protein tercerna cukup tinggi pada oncom dari bungkil kacang tanah. Selain itu, populasi kapang diketahui dapat menekan produksi aflatoksin dari Aspergillus flavus yang telah mencemari substrat (bungkil). Degradasi yang dilakukan oleh kapang menyebabkan beberapa oligosakarida sederhana seperti sukrosa, rafinosa, dan stakhiosa menurun pesat kandungannya akibat aktivitas enzim α-galaktosidase yang dihasilkan kapang (terutama N. sitophila).Hal ini baik bagi pencernaan karena rafinosa dan stakhiosa bertanggung jawab atas gejala flatulensi yang dapat muncul bila orang mengonsumsi biji kedelai atau kacang tanah.

            Selamat berwirausaha, semoga sukses dan berkah….

 

 

 

Mengenal Jenis Tanaman Gaharu Gyrinops versteegii

 

Jual Inokulan Fusarium solani

087731375234

Salah satu jenis tanaman penghasil gaharu adalah jenis gyrinops versteegii. Menurut betrianigrum (2009 cit.Gilg 1932) taksanomi gaharu jenis grynops versteegii. Gilg sebagai berikut :

Kingdom       : Plantea

Devisi            :Spermatophya 

Sub-Devisi    :Dicotyledone 

Sub Class      :Magnoliopsida 

Family           : Thymelaeaceae

Genus            :Grynops 

Species          :Gyrinops versteegii 

 

Morfologi gaharu jenis gyrinops versteegii. Gilg ini merupakan salah satu jenis tanaman penghasil gaharu yang mempunyai bentuk pohon ciri dan sifat morfologinya hampir sama dengan kelompok anggota familythymeleaecea lainnya, hal ini dilihat dari bentuk daun, buah dan batangnya. Gaharu jenis gyrinops memiliki batang yang lonjong memanjang, hijau tua, tepi daun merata, ujung meruncing, panjang sekitar 8 cm lebar 5-6 cm. Buah berwarna kuning-kemerahan dengan bentuk lonjong. Batang gaharu jenis gyrinops berwarna abu kecoklatan, banyak cabang, tinggi pohon dapat mencapai 30 m dan berdiameter sekitar 50 cm (Sumarna,2012).

Di indonesia sebaran tumbuh pohon penghasil gaharu dijumpai di wilayah hutan Jawa, Sumatera, Sulawesi,  Maluku, Irian Jaya dan Nusa Tenggara. Pohon penghasil gaharu dapat tumbuh ketinggian 0-2.400 mdpl, selain itu iklim yang cocok untuk pertumbuhan gaharu yaitu pada daerah yang beriklim panas dengansuhu antara 28 C-34  C, dengan kelembaban sekitar 80% dan bercurah hujan antara 1.000-2.000 mm/th. 

Lahan tempat tumbuh pada berbagai variasi kondisi srtuktur dan tekstur tanah, baik pada lahansubur, sedang hingga lahan margijal. Gaharu dapat dijumpai pasa ekosisitem hutan rawa, gambut, hutan daratan rendah atau hutan pegunungan, bahkan dijumpai pada lahan berpasir berbatu yang ekstrim (Sumarna, 2012).

Hampir semua bagian tanaman gaharu bermanfaat dan bernilai ekonomi tinggi, daun dan buahnya digunakan sebagia bahan baku pengganti teh yang berkhasiat sebagai obat malaria. Selain itu, pohon gaharu juga berfungsi sebagai kenservasi tanah dan air karena memiliki tajuk yang rapat dan sistem perakaran yang dalam.

 

Peluang Bisnis Budidaya Tanaman Penghasil Gaharu

 

Jual Fusarium solani serbuk - Inokulan Gaharu

087731375234

GAHARU adalah merupakan komoditas pertanian yang mempunyai nilai ekonomi yang sangat tinggi. Hampir semua bagian pohon penghasil gaharu ini dapat dimanfaatkan untuk bahan baku produk. Beberapa tanaman penghasil gaharu antara lain adalah ; Aquilaria apiculina, Aquilaria baillonii, Aquilaria baneonsis, Aquilaria beccarain, Aquilaria brachyantha, Aquilaria crassna Aquilaria cumingiana, Aquilaria filaria, Aquilaria grandiflora, Aquilaria hilata, Aquilaria khasiana, Aquilaria malaccensis, Aquilaria microcarpa, Aquilaria rostrata, Aquilaria sinensis, Aquilaria subintegra. Proses pembentukan gaharu pada tanaman penghasil gaharu dapat terjadi secara alami atau melalui proses penyuntikan inokulan penginveksi yang disunttikan ke dalam batang tanaman yang dibor terlebih dahalu.

 Kayu gaharu yang terinfeksi atau disebut gubal mempunyai nilai jual yang sangat tinggi, sementara gubal gaharu kualitas rendah pun masih memiliki nilai jual yang menarik. Daun gaharu dapat dimanfaatkan untuk pembuatan teh gaharu.Turunan produk gaharu pun semakin hari semakin meningkat variasinya, menempatkan pohon gaharu sebagai pohon industri.

Manfaat gaharu diantaranya adalah pewangi rungan, bahan baku industri parfum ekslusif, bahan baku industri kosmetika, bahan baku untuk bahan obat (kanker, asmatik, perangsang, dll), bahan HIO (untuk ritual agama hindu, budha dan Kong Hu Chu), bahan Kohdoh (jepang), serta daunnya dimanfaatkan untuk teh hijau (agarwood tea). Harga gubal gaharu bervariasi tergantung grade(kualitas), harga gubal gaharu grade super di pasar lokal mencapai Rp 25 jt/kg, sedangkan harga terendah Rp 50 ribu/kg untuk kayu gaharu yang tidak mengandung resin sama sekali.

Negara potensial pemakai gaharu (pengimpor) adalah Saudi Arabia, Kuwait Yaman, United Emirat, Turki, Singapura, Jepang, dan Amerika. Kebutuhan gaharu dari tahun ke tahun terus meningkat berbanding lurus dengan harganya.Sementara stok gaharu alam semakin menurun akibat ditebang terus-menerus tanpa diimbangi penanaman.Kebutuhan gaharu dunia terus meningkat sehubungan dengan semakin meningkatnya pemanfaatan gaharu terutama untuk obat-obatan di China.Kebutuhan obat merupakan kebutuhan pokok umat manusia, yang keberadaanya sangat dibutuhkan manusia.

Indonesia merupakan salah satu Negara penghasil gaharu yang cukup besar, namun saat ini potensinya menurun, bahkan gaharu sudah menjadi jenis yang langka ditemukan.Beberapa jenis pohon penghasil gaharu sebagian besar termasuk dalam famili Themeleaceae, terutama dari genus Aquilaria dan Gyrinops, yang dapat menghasilkan gubal gaharu dengan kualitas terbaik (harga tinggi).Untuk mendapatkan hasil yang maksimal dalam penanaman gaharu diperlukan pengetahuan yang memadai dalam bidang silvikultur (teknik budidaya) dan teknologi untuk mempercepat mendapatkan gubal gaharu (inokulasi).Tanpa mengetahui kedua masalah tersebut diatas, rasanya sulit untuk mendapatkan hasil gaharu yang memuaskan.Perlu diketahui bahwa tidak semua pohon gaharu menghasilkan gubal gaharu, hanya pohon yang terinfeksi cendawan tertentu saja yang dapat menghasilkan gubal gaharu.Sehingga secara alami pohon gaharu yang dapat menghasilkan gubal, prosentasenya sangat kecil, Oleh karena itu diperlukan teknologi inokulasi untuk mempercepat terbentuknya gubal gaharu.Ayo lestarikan hutan Indonesia demi generasi mendatang.

Gaharu adalah sejenis kayu dengan berbagai bentuk dan warna yang khas, memiliki kandungan damar wangi, berasal dari pohon atau bagian pohon penghasil gaharu, sebagai akibat dari proses infeksi yang terjadi secara alami atau buatan pada pohon Aguilaria sp (Thymelaeaceae).Setelah Penyulingan Harga Minyak Gaharu Bisa Mencapai Sekitar USD 5,000 ~ USD 10,000/kg dan Setelah Dibuat Menjadi Cairan Extract Harganya Mampu Mencapai Lebih Dari USD 30,000 atau Rp. 300.000.000,- / Liter.

Manfaat Agarwood

1.      Aktivitas Kebudayaan - Islam, Budha, Hindu

2.      Perayaan Keagamaan - Kebanyakan di Negara Islam dan Arab

3.      Wangi Parfum - Wanginya Tahan Lama Banyak Diminati di Negara Eropa Seperti Daerah Yves Saint Laurent, Zeenat dan Amourage

4.      Aroma Terapi - Menyegarkan Tubuh, Perayaan dan Undangan

5.      Kecantikan - Sabun, Shampo Yang Harum Semerbak

6.      Obat & Kesehatan - Biasa Digunakan di Pengobatan Tradisional Khususnya Dinegara China dan Jepang

7.      Koleksi Pribadi - Untuk Ruangan Besar Khusus Eksklusif

 

Kebutuhan Agarwood Dunia

Kebutuhan dunia akan agarwood atau gaharu terus meningkat. Menurut statistik, Indonesia yang pada tahun 1995 menjadi pengexport gaharu yang cukup besar, kini nilai exportnya semakin menurun.Mengingat permintaan dunia akan agarwood yang terus meningkat, maka proyek Pengembangan Agarwood sangat menguntungkan "Investment for Highest Profit"

 

Penanganan Bibit Gaharu Cabutan/Stump

Berikut ini kami sampaikan beberapa catatan untuk mendukung keberhasilan pemeliharaan bibit gaharu (Aquilaria malaccensi) yang berasal dari cabutan/stump (pengiriman dari tempat lain) :

Pemeliharaan bibit yang berasal dari cabutan/stump harus terlebih dahulu dikondisikan dengan penyungkupan.Pemeliharaan bibit tanpa penyungkupan beresiko kegagalan walaupun bedeng pemeliharaan telah diletakkan di bawah naungan sekalipun.Ikuti petunjuk teknis pembuatan sungkup sebagaimana yang kami lampirkan.Sungkup terbuat dari plastic dan plastic sungkup tersebut dapat diperoleh dari toko peralatan pertanian atau toko plastic.Media tanam sebaiknya merupakan campuran: tanah : kompos : pasir (2:1:1)

Penyiraman pertama harus betul-betul jenuh air dan penyiraman berikutnya hanya dilakukan jika media tanam terlihat kering.Dalam penyiraman tersebut dihindari membuka sungkup ukuran besar, cukup hanya dimasuki selang/lobang kecil.Peletakan sungkup/bedeng pemeliharaan harus di bawah naungan tegakan (sebaiknya rindang) sehingga tidak ada sinar matahari langsung dengan intensitas tinggi dan lama.Paranet/shading net 75% diperlukan jika naungan tegakan kurang dan sebaiknya diatas sungkup diberikan lagi jerami/ pelepah daun kelapa/sawit.Periksa jika terjadi kebocoran pada sungkup.Hindari membuka-tutup sungkup cukup sering. Dengan pembuatan sungkup yang tepat, kondisi di dalam sungkup akan terlihat mengembun dan tidak kering. Jika terlalu sering membuka dan menutup sungkup bibit beresiko kematian.

Setelah 3-4 minggu, sungkup dibuka secara bertahap, dilarang membuka sungkup sekaligus.Contoh : hari pertama dibuka 0,5 meter, hari kedua 1 meter dan seterusnya. Jika dibuka sekaligus bibit beresiko kematian.Setelah dikeluarkan dalam sungkup, bibit dipeliharan dibawah naungan paranet dan sebaiknya juga di bawah tegakan agar tercipta iklim yang baik bagi pertumbuhan bibit.

MEMPERCEPAT PRODUKSI GAHARU DENGAN TEKNOLOGI INOKULASI

Gaharu merupakan komoditi elit hasil hutan bukan kayu yang saat ini banyak diminati oleh konsumen baik dalam maupun luar negeri. Pemanfaatan gaharu sangat bervariasi dari bahan baku pembuatan dupa, parfum, aroma terapi, sabun, body lotion, hingga bahan obat-obatan sebagai anti asmatik, anti mikrobia, stimulan kerja syaraf, dan pencernaan. Akibat dari pola pemanenan dan perdagangan yang masih mengandalkan alam, beberapa jenis tertentu pohon penghasil gaharu mulai langka dan telah masuk dalam appendix II CITES.Mengantisipasi kemungkinan pubahnya pohon penghasil gaharu jenis-jenis langka sekaligus pemanfaatannya secara lestari.Badan Litbang Kehutanan melakukan upaya konservasi dan budidaya serta rekayasa untuk mempercepat produksi gaharu dengan teknologi induksi atau inokulasi.

Serangkaian penelitian yang dilakukan Badan Litbang Kehutanan saat ini telah menghasilkan teknik budidaya pohon penghasil gaharu dengan baik, mulai dari perbenihan, persemaian, penanaman, hingga pemeliharaannya.Sejumlah isolat jamur pembentuk gaharu hasil eksplorasi dari berbagai daerah di Indonesia telah teridentifikasi berdasar ciri morfologis.Penelitian yang dilakukan juga telah menghasilkan empat isolat jamur pembentuk gaharu yang telah teruji dan mampu membentuk infeksi gaharu dengan cepat.Inokulasi menggunakan isolat jamur tersebut telah menunjukkan tanda-tanda keberhasilan hanya dalam waktu satu bulan.Ujicoba telah dilakukan di Kalimantan Selatan, Kalimantan Barat, Jawa Barat (Sukabumi dan Darmaga), dan Banten (Carita).

Secara teknis, garis besar tahapan rekayasa produksi gaharu dimulai dengan isolasi jamur pembentuk yang diambil dari pohon penghasil gaharu sesuai jenis dan ekologi sebaran tumbuh pohon yang dibudidayakan. Isolat tersebut kemudian diidentifikasi berdasar taksonomi dan morfologi lalu dilakukan proses skrining untuk memastikan bahwa jamur yang memberikan respon pembentukan gaharu sesuai dengan jenis pohon penghasil gaharu agar memberikan hasil optimal. Tahap selanjutnya adalah perbanyakan jamur pembentuk gaharu tadi, kemudian induksi, dan terakhir pemanenan.Untuk saat ini, produksi gaharu buatan yang dipanen pada umur 1 tahun berada pada kelas kemedangan dengan harga jual US$ 100 per kilogram.

 

Kriteria Kualitas Gaharu

Di pasaran dalam negeri, kualitas gaharu dikelompokkan menjadi 6 kelas mutu, yaitu Super (Super King, Super, Super AB), Tanggung, Kacangan (Kacangan A, B, dan C), Teri (Teri A, B, C, Teri Kulit A, B), Kemedangan (A, B, C) dan Suloan.Klasifikasi mutu tersebut berbeda dengan Standar Nasional Indonesia (SNI) yang membagi mutu gaharu menjadi 3 yaitu Klas Gubal, Kemedangan, dan Klas Abu.Perbedaan klasifikasi tersebut sering merugikan pencari gaharu karena tidak didasari dengan kriteria yang jelas.

 

Peluang Bisnis Oncom Merah

 

 

Jual Ragi Oncom Merah

087731375234

 

Oncom adalah salah satu produk makanan tradisional yang sudah sangat popular di Indonesia. Oncom sangat digemari oleh banyak kalangan karena rasanya yang khas dan nikmat. Berbagai olahan oncom antara lain adalah; keripik oncom, oseng-oseng lenca - oncom, pepes oncom, dan aneka masakan lainya. Oncom bisa menjadi produk unggulan yang sangat prospektif baik pasar local maupun manca negara. Saat ini, para pelaku usaha sudah mulai melirik bisnis oncom yang masih belum banyak pemainnya. Umumnya para produsen oncom ada di Jawa khususnya Jawa Barat. Saat ini pun, orang luar negeri mulai tertarik berbisnis oncom di negara nya sebagaimana produk tempe sudah populer di manca negara dan menjadi peluang bisnis yang menjanjikan untuk industri mikro dan menengah.

Di Indonesia dikenal oncom merah dan oncom hitam. Oncom merah merupakan produk hasil fermentasi dengan menggunakan kapang Neurospora sitophila atau N. intermedia sedangkan oncom hitam berasal dari jenis kapang tempe Rhizopus oligosporus dan atau jenis-jenis Mucor. Namun, pada umumnya oncom merah lebih popular dan lebih diminati oleh masyarakat karena cita rasa dan aromanya lebih nikmat. Seiring berkembangnya peminat oncom merah, maka menjadi peluang yang sangat menjanjikan untuk memproduksi oncom merah maupun produk olahannya.

Oncom merah umumnya dibuat dari ampas tahu, yaitu kedelai yang telah diambil proteinnya dalam pembuatan tahu, sedangkan oncom hitam umumnya dibuat dari bungkil kacang tanah yang kadangkala dicampur ampas (onggok) singkong atau tepung singkong (tapioka), agar mempunyai tekstur yang lebih baik dan lebih lunak. Bungkil kacang tanah adalah ampas yang berasal dari kacang tanah yang telah diambil minyaknya dengan proses pemerasan mekanis atau proses ekstraksi. Walaupun kedua bahan substrat tersebut berupa limbah, kandungan gizinya sesungguhnya masih cukup tinggi untuk dapat dimanfaatkan manusia.

 

Kapang oncom mengeluarkan enzim amilase, lipase dan protease yang aktif selama proses fermentasi dan memegang peranan penting dalam penguraian pati menjadi gula, penguraian bahan-bahan dinding sel kacang, penguraian lemak, serta pembentukan sedikit alkohol dan berbagai ester yang memunculkan aroma sedap dan harum. Protein juga terdegradasi namun tidak penuh dan berakibat meningkatnya daya cerna.

 

Proses pembuatan oncom dari bungkil kacang tanah, pertama-tama direndam dalam air bersih selama 3-4 jam, setelah itu ditiriskan, diayak, dan kemudian dicampur dengan tepung tapioka. Selanjutnya, campuran ini dikukus. Setelah masak, adonan diratakan di atas tatakan dari bambu, dan ditaburi dengan ragi setelah dingin. Inkubasi dilakukan setelah ditutup dengan daun pisang bersih dalam suhu ruang yang hangat (25-30 °C) dan kelembaban tinggi, selama 2 sampai 3 hari.

Oncom memiliki kandungan gizi yang cukup tinggi dan dapat menjadi sumber alternatif pemenuhan gizi masyarakat karena harganya yang murah. Kandungan karbohidrat dan protein tercerna cukup tinggi pada oncom dari bungkil kacang tanah. Selain itu, populasi kapang diketahui dapat menekan produksi aflatoksin dari Aspergillus flavus yang telah mencemari substrat (bungkil). Degradasi yang dilakukan oleh kapang menyebabkan beberapa oligosakarida sederhana seperti sukrosa, rafinosa, dan stakhiosa menurun pesat kandungannya akibat aktivitas enzim α-galaktosidase yang dihasilkan kapang (terutama N. sitophila).Hal ini baik bagi pencernaan karena rafinosa dan stakhiosa bertanggung jawab atas gejala flatulensi yang dapat muncul bila orang mengonsumsi biji kedelai atau kacang tanah.

 

 

 

 

Membuat Olahan Oncom

 

Jual Ragi Oncom

087731375234

Resep Tumis Oncom Leunca

            Tumis oncom leunca merupakan salah satu menu masakan yang sangat banyak diminati banyak kalangan. Rasanya yang nikmat dan aromanya khas oncom menjadi sangat spesial untuk makan siang ataupun makan malam dan Indonesia banget. Oncom merupakan olahan dari ampas tahu atau bungkil kacang yang difermentasi dengan ragi oncom merah (Neurospora sithopilla) atau ragi oncom hitam ( Rizophus oligosporus atau Rizhomucor) kurang lebih 3 hari sehingga dihasilkan oncom yang punya cita rasa dan aroma yang khas. Sedangkan Leunca adalah salah satu terong-terongan berbentuk bulat kecil biasa dimakan untuk lalaban atau masakan oseng. Kombinasi oncom dan leunca dimasak tumik menjadi salah satu menu masakan yang sangat gurih dan nikmat ngangenin. Berikut ini cara membuat masakan tumis oncom leunca:

 

Bahan:

1.      Siapkan leunca 300 gram, kemudian cuci bersih

2.      Siapakan oncom 250 gr oncom, kemudian potong-potong, goreng dan ulek

3.      2 batang daun bawang, iris serong

4.      Daun kemangi secukupnya

5.      1 buah tomat, potong dadu

 

Bumbu:

1.      3 lembar daun salam

2.      Garam secukupnya

3.      Gula merah secukpnya

4.      Mrica secukupnya

5.      Kecap secukpnya

6.      Laos sekupnya iris tipis-tipis

7.      Penyedap masakan non MSG

8.      5 siung bawang merah

9.      3 siung sawang putih

10.  3 cm kencur

11.  1 sdt terasi, goring

12.  3 buah cabe rawit

 

Cara membuat:

1. Tumis bumbu halus sampai harum.

2. Masukkan tomat dan daun salam. Masak sampai tomat matang.

3. Masukkan oncom dan air, aduk rata. Masak sampai air meresap.

4. Masukkan leunca, garam, dan gula. Aduk rata.

5. Terakhir, masukkan kemangi dan daun bawang. Aduk rata sebentar. Angkat.

6. Tumis Oncom Leunca siap disajikan.

Ragi Oncom

Pengembangan Sektor Perikanan Berbasis Bioteknologi

 

 

            Sekstor perikanan adalah salah satu sektor ekonomi yang yang sangat potensial untuk dikembangkan. Permintaan komoditas ikan yang cukup tinggi dan cenderung meningkat dari tahun ke tahun menyebabkan semakin meningkatnya industri perikanan di Indonesia. Indonesia memiliki wilayah laut yang luas dan perairan daratan yang potensial untuk dikembangkan sebagai industrperikanan sangat menjanjikan. Pasar lokal maupun pasar ekspor komoditas perikanan masih terbuka cukup lebar. Kegiatan budidaya ikan secara intensif mulai berkembang di Indonesia seiring dengan meningkatnya permintaan

Produksi ikan nasional berasal dari ikan tangkap dan hasil budidaya. Budidaya ikan air tawar yang sedang popular seperti nila, patin, mujair, lele,kerapu, gabus, guramih, dan lain-lain. Saat ini juga sedang digalakan tambak-tambak udang di tepi pantai atau perairan darat, jenis udang yang banyak dibudidauyakan adalah jenis udang vannamei, galah, dan lobster.

Penerapan sistem budidaya intensif dan ramah lingkungan sangat diperlukan guna meningkatkan produksi.  Tingginya angka kematian dan rendahanya konversi pakan (FCR) menyebabkan menurunya produksifitas. Tingginya angka kematian seringkali disebabkan oleh faktor cuaca atau penyakit. Faktor cuaca yang ekstrim seperti hujan yang terus menerus dan suhu yang dingin seringkali menjadi penyebab kegagalan panen pada budidaya udang vannamei. Selain itu, faktor penyebabkan kematian juga dapat disebabkan oleh racun amoniak dan nitrit hasil sisa pakan dan juga limbah berbahaya yang mencemari lingkungan. Untuk menekan angka kematian, para pelaku usaha budidaya perikanan umumnya menggunakan bahan obat-obatan kimia. Penggunaan obat-obatan kimia memang mampu secara efektif menekan berkembangnya penyakit, namun disisi lain efek negatifnya adalah residu bahan kimia pada kimia dapat menjadi masalah kesehatan bagi manusia. Di beberapa negara maju sudah mulai mensyaratkan komoditi ikan yang masuk ke negaranya harus bebas residu kimia. Oleh karena itu pentingnya para pembudidaya perikanan di Indonesia untuk menerapkan best aquaculture practices dalam sertifikasi produk akuakultur yang diekspor, mensyaratkan praktek akuakultur yang ramah lingkungan.

Perkembangan teknologi akuakultur saat ini perlu memfokuskan pada upaya budidaya perikanan yang ramah lingkungan. Saat ini para pembudidaya sudah mulai memanfaatkan mikroba probiotik untuk menekan bakteri pathogen dan memperbaiki kondisi lingkungan air (bioremediasi). Penggunaan probiotik untuk sektor perikanan cukup efektif untuk menekan tingkat kematian dan meningkatkan produksi. Beberapa jenis mikroba mampu meningkatkan konversi pakan (FCR) seperti golongan Lactobacillus. Beberapa jenis mikroba juga mampu menetralisir racun amoniak dan nitrit sisa pakan yang dapat membunuh ikan, beberapa jenis mikroba jenis ini antara lain adalah Nitrobacter, Nitrosomonas, dll. Amoniak (NH3) merupakan hasil dari katabolisme protein dalam tubuh organisme akuatik yang tidak terionisasi melalui insang. Amoniak mengandung unsure Nitrogen dan Hidrogen. Nitrogen dalam sistem akuakultur terutama berasal dari pakan buatan yang biasanya mengandung protein dengan kisaran 13 - 60% (2 - 10% N) tergantung pada kebutuhan dan stadia organisme yang dikultur (Avnimeleeh & Ritvo, 2003; Gross & Boyd 2000; Stickney, 2005). Dari total protein yang masuk ke dalam sistem budidaya, sebagian akan dikonsumsi oleh organisme budidaya dan sisanya terbuang ke dalam air. Protein dalam pakan akan dicerna namun hanya 20 - 30% dari total nitrogen dalam pakan dimanfaatkan menjadi biomasa ikan (Brune et al., 2003).

Beberapa jenis mikroba mampu merombak limbah menjadi bioflock yang dapat menjadi sumber pakan ikan. Penelitian dan penerapan Biofloc adalah sejak tahun 1941 pada pengolahan air limbah di Amerika, untuk mensubtitusi penggunaan plankton.  Bioflok atau Flok merupakan istilah bahasa slang dari istilah bahasa baku “Activated Sludge” (“Lumpur Aktif”) yang diadopsi dari proses pengolahan biologis air limbah (biological wastewater treatment). Salah satu ciri khas bakteri pembentuk bioflocs adalah kemampuannya untuk mensintesa senyawa Poli hidroksi alkanoat ( PHA ), terutama yang spesifik seperti poli β‐hidroksi butirat. Senyawa ini diperlukan sebagai bahan polimer untuk pembentukan ikatan polimer antara substansi substansi pembentuk bioflocs.  Bioflocs terdiri atas partikel serat organik yang kaya akan selulosa, partikel anorganik berupa kristal garam kalsium karbonat hidrat, biopolymer (PHA), bakteri, protozoa, detritus (dead body cell), ragi, jamur dan zooplankton. Bakteri yang mampu membentuk bioflocs diantaranya:  Zooglea ramigera,  Escherichia intermedia,  Paracolobacterium aerogenoids, Bacillus subtilis, Bacillus cereus, Flavobacterium, Pseudomonas alcaligenes, Sphaerotillus natans, Tetrad dan Tricoda

         Teknologi bioflok merupakan salah satu alternatif baru dalam mengatasi masalah kualitas air dalam akuakultur yang diadaptasi dari teknik pcngolahan limbah domestik secara konvensional (Avnimelech, 2006; de Schryver et al., 2008). Prinsip utama yang diterapkan dalam teknologi ini adalah manajemen kualitas air yang didasarkan pada kemampuan bakteri heterotrof untuk memanfaatkan N organik dan anorganik yang terdapat di dalam air. Secara teoritis, pemanfaatan N oleh bakteri heterotrof dalam sistem akuakultur disajikan dalam reaksi kimia berikut (Ebeling et al., 2006):

Secara teoritis untuk mengkonversi setiap gram N dalam bentuk ammonia, diperlukan 6,07 g karbon organik dalam bentuk karbohidrat, 0,86 karbon anorganik dalam bentuk alkalinitas dan 4,71 g oksigen terlarut. Dari persamaan ini juga diperoleh bahwa rasio C/N yang diperlukan oleh bakteri heterotrof adalah sekitar 6.

Kemampuan bioflok dalam mengontrol konsentrasi ammonia dalam sistem akuakultur secara teoritis maupun aplikasi telah terbukti sangat tinggi. Secara teoritis Ebeling et al. (2006) dan Mara (2004) menyatakan bahwa immobilisasi ammonia oleh bakteri heterotrof 40 kali lebih cepat daripada oleh bakteri nitrifikasi. Secara aplikasi de Schryver et al. (2009) menemukan bahwa bioflok yang ditumbuhkan dalam bioreaktor dapat mengkonversi N dengan konsentrasi 110 mg NH4/L hingga 98% dalam sehari. Kondisi yang mendukung pembentukan Bioflocs; Aerasi dan pengadukan (pergerakan air oleh aerator), Karbon dioksida (CO2)

a.        Aerasi dan pengadukan (pergerakan air oleh aerator)

Oksigen jelas diperlukan untuk pengoksidasian bahan organik (COD/BOD), kondisi optimum sekitar 4‐5 ppm oksigen terlarut. Pergerakan air harus sedemikian rupa, sehingga daerah mati arus (death zone) tidak terlalu luas, hingga daerah yang memungkinkan bioflocs jatuh dan mengendap relatif kecil.

b.         Karbon dioksida (CO2)

Karbon dioksida menjadi salah satu kunci terpenting bagi pembentukan dan pemeliharaan bioflocs. Bakteri gram negatif non pathogen seperti bakteri pengoksidasi sulfide menjadi sulfat ( Thiobacillus, photosynthetic bacteria seperti Rhodobacter), bakteri pengoksidasi besi dan Mangan ( Thiothrix ) dan bakteri pengoksidasi ammonium dan ammonia ( Nitrosomonas dan Nitrobacter ) memerlukan karbon dioksida untuk pembentukan selnya, mereka tidak mampu mengambil sumber karbon dari bahan organic semisal karbohidrat, protein atau lemak. Termasuk juga Zooglea, Flavobacterium, tetrad/tricoda dan bakteri pembentuk bioflocs lainnya. Bahkan Bacillus sendiri, sebagai pemanfaat karbon dari bahan organik dan menghasilkan gas karbon dioksida sebagai hasil oksidasinya, memerlukan karbondioksida dalam pernafasan anaerobnya ketika melangsungkan reaksi denitrifikasi.

 

Jual Aneka Isolat Mikroba

Telp.087731375234

A
Absidia corymbifera FNCC	Aspergillus terreus FNCC
Acetobacter aceti FNCC	Atopobium vaginae ATCC BAA-55
Acetobacter xylinum FNCC	Aspergillus versicolor FNCC
Achomobachter xylosoxidans subsp. Xylosoxidans ATCC 27061	Aspergillus wentii FNCC
Acinetobacter baumanni ATCC 19606	Aureobasidium pullulans FNCC
Acinetobacter baumanni ATCC BAA-747	B
Acinetobacter Iwoffii ATCC 17925	Bacillus amyloliquefaciens FNCC
Acinetobacter sp. ATCC 49137	Bacillus amylolyticus FNCC
Acinetobacter sp. ATCC 49139	Bacillus badius ATCC 14574
Acinetobacter sp. ATCC 49466	Bacillus cereus ATCC 11778
Acinetobacter sp. ATCC 9957	Bacillus cereus ATCC 14579
Actinomyces odontolyticus ATCC 17929	Bacillus cereus FNCC
Actinomyces viscosus ATCC 15987	Bacillus coagulans FNCC
Actinomyces viscosus ATCC 43146	Bacillus circulans ATCC 61
Aerococcus viridans ATCC 11563	Bacillus licheniformis ATCC 12759
Aerococcus viridans ATCC 700406	Bacillus macerans Schardinger FNCC
Aeromonas caviae ATCC 15468	Bacillus megaterium  ATCC 14581
Aeromonas hydrophila ATCC 35654	Bacillus megaterium FNCC
Aeromonas hydrophila ATCC 49140	Bacillus polymyxa FNCC
Aeromonas hydrophila ATCC 7965	Bacillus pumilus ATCC BAA-1434
Aeromonas hydrophila ATCC 7966	Bacillus stearothermophilus ATCC 10149
Aeromonas salmonicida ATCC 33658	Bacillus stearothermophillus FNCC
Aeromonas veronii biogroup sobria ATCC 9071	Bacillus subtilis ATCC 6633
Aggregatibacter aphrophilus ATCC 33389	Bacillus subtilis FNCC
Agrobacterium tumefaciens FNCC	Bacteroides fragilis ATCC 23745
Alcaligenes faecalis ATCC 35655	Bacteroides fragilis ATCC 25285
Alcaligenes faecalis subsp. Faecalis ATCC 8750	Bacteroides ovatus ATCC 8483
Alcaligenes xylosoxydans subsp. denitrificans FNCC	Bacteroides ovatus ATCC BAA-1296
Alternaria alternata FNCC	Bacteroides ovatus ATCC BAA-1304
Alternaria alternata TX 8025	Bacteroides thetaiotaomicron ATCC 29741
Aneurinibacillus aneurinolyticus ATCC 11376	Bacteroides uniformis ATCC 8492
Arcanobacterium pyogenes ATCC 19411	Bacteroides ureolyticus ATCC 33387
Arcanobacterium pyogenes ATCC 49698	Bacteroides vulgatus ATCC 8482
Aspergillus awamori FNCC	Bifidobacterium breve ATCC 15700
Aspergillus brasiliensis ATCC 16404	Bordetella brochiseptica ATCC 10580
Aspergillus brasiliensis ATCC 9642	Bordetella brochiseptica ATCC 4617
Aspergillus candidus FNCC	Bordetella pertussis ATCC 12742
Aspergillus flavipes FNCC	Bordetella pertussis ATCC 9340
Aspergillus flavus FNCC	Brevibacterium flavum FNCC
Aspergillus fumigatus FNCC	Brevibacterium lipolyticum FNCC
Aspergillus fumigatus KM 8001	Brevibscillus agri ATCC 51663
Aspergillus japonicus FNCC	Brevibscillus laterosporus ATCC 64
Aspergillus niger FNCC	Brevundimonas diminuta ATCC 11568
Aspergillus niveus FNCC	Brevundimonas diminuta ATCC 19146
Aspergillus ochraceus FNCC	Brochothrix thermosphacta ATCC 11509
Aspergillus orzaye ATCC 10124	Burkholderia cepacia ATCC 17765
Aspergillus oryzae FNCC	Burkholderia cepacia ATCC 25416
Aspergillus parasiticus FNCC	Burkholderia cepacia ATCC 25608
Aspergillus punicius FNCC	C
Aspergillus restrictus FNCC	Campylobacter coli ATCC 33559
Aspergillus sojae FNCC	Campylobacter coli ATCC 43478
Aspergillus tamarii FNCC	Campylobacter jejuni  ATCC 29428
Campylobacter jejuni subsp. Jejuni ATCC 33291	Clostridium histolyticum ATCC 19401
Campylobacter jejuni subsp. Jejuni ATCC 33292	Clostridium novyi ATCC 7659
Candida albicans ATCC 10231	Clostridium novyi Type A ATCC 19402
Candida albicans ATCC 14053	Clostridium septicum ATCC 12464
Candida albicans ATCC 2091	Clostridium sordellii ATCC 9714
Candida albicans ATCC 36232	Clostridium sporogenes ATCC 11437
Candida albicans ATCC 60193	Clostridium sporogenes ATCC 19404
Candida albicans ATCC 66027	Clostridium sporogenes ATCC 3584
Candida albicans ATCC 90028	Clostridium tertium ATCC 19405
Candida curvata FNCC	Corynebacterium diphtheriae ATCC 13812
Candida dubliniensis ATCC MYA-577	Corynebacterium glutanicum FNCC
Candida geochares ATCC 36852	Corynebacterium hoagii FNCC
Candida glabrata ATCC 15126	Corynebacterium jeikeium ATCC 43734
Candida glabrata ATCC 2001	Corynebacterium minutissimum ATCC 23348
Candida glabrata ATCC 66032	Corynebacterium pseudodiphhtheriticum ATCC 10700
Candida glabrata ATCC MYA-2950	Corynebacterium pseudodiphhtheriticum ATCC 10701
Candida guiliermondii ATCC 6260	Corynebacterium renale ATCC 19412
Candida kefyr ATCC 204093	Corynebacterium renale ATCC BAA-1785
Candida kefyr ATCC 2512	Corynebacterium striatum ATCC BAA-1293
Candida kefyr ATCC 66028	Corynebacterium urealyticum ATCC 43044
Candida kefyr FNCC	Corynebacterium xerosis ATCC 373
Candida krusei ATCC 14243	Cronobacter muytjensii ATCC 51329
Candida krusei ATCC 34135	Cryptococcus albidus ATCC 66030
Candida krusei FNCC	Cryptococcus albidus var. Albidus ATCC 10666
Candida lipolytica FNCC	Cryptococcus albidus var. Albidus ATCC 34140
Candida lusitaniae ATCC 34449	Cryptococcus curvatus FNCC
Candida lusitaniae ATCC 42720	Cryptococcus humicolus ATCC 9949
Candida lusitaniae ATCC 66035	Cryptococcus laurentii ATCC 18803
Candida norvegensis FNCC	Cryptococcus laurentii ATCC 66036
Candida parapsilosis ATCC 22019	Cryptococcus laurentii ATCC 76483
Candida parapsilosis ATCC 34136	Cryptococcus neoformans ATCC 14116
Candida parapsilosis ATCC 90018	Cryptococcus neoformans ATCC 204092
Candida tropicalis ATCC 1369	Cryptococcus neoformans ATCC 32045
Candida tropicalis ATCC 201380	Cryptococcus neoformans ATCC 34877
Candida tropicalis ATCC 66029	Cryptococcus neoformans ATCC 56991
Candida tropicalis ATCC 750	Cryptococcus neoformans ATCC 66031
Candida tropicalis FNCC	Cryptococcus neoformans ATCC 76484
Candida utilis ATCC 9950	Cryptococcus uniguttulatus ATCC 66033
Candida utilis FNCC	Curtobacterium pusillum ATCC 19096
Candida wicherhamii FNCC	Curvularia lunata FNCC
Cellulosimicrobium cellulans ATCC 27402	Curvularia sp. KM 8023
Chlamydomucor oryzae FNCC	D
Citrobacter braakii ATCC 10625	Debaryomyces hansenii FNCC
Citrobacter diversus KM 11012	Debaryomyces polymorphus FNCC
Citrobacter freundii ATCC 8090	E
Cladosporium cladosporioides FNCC	Edwardsiella tarda ATCC 15947
Clostridium acetobutylicum FNCC	Eggerthella lenta ATCC 43055
Clostridium barati ATCC 27638	Eikenella corrodens ATCC 23834
Clostridium difficile ATCC 43255	Eikenella corrodens ATCC BAA-1152
Clostridium difficile ATCC 700057	Elizabethkingia meningoseptica ATCC 13253
Clostridium difficile ATCC 9689	Enterobacter aerogenes ATCC 13048
Clostridium difficile ATCC BAA-1870	Enterobacter aerogenes ATCC 35028
Enterobacter aerogenes ATCC 35029	Fusarium longipes FNCC
Enterobacter aerogenes ATCC 49071	Fusarium moniliforme FNCC
Enterobacter cloacae ATCC 13047	Fusarium semitectum FNCC
Enterobacter cloacae ATCC 23355	Fusarium solani FNCC
Enterobacter cloacae ATCC 35030	Fusobacterium mortiferum ATCC 25557
Enterobacter gergoviae ATCC 33028	Fusobacterium mortiferum ATCC 9817
Enterobacter hormaechei ATCC 700323	Fusobacterium necrophorum ATCC 25286
Enterococcus avium ATCC 14025	Fusobacterium nucleatumum ATCC 10953
Enterococcus casseliflavus ATCC 700327	Fusobacterium nucleatumum subsp. Nucleatum ATCC 25586
Enterococcus durans ATCC 11576	Fusobacterium oxysporum ATCC 48112
Enterococcus durans ATCC 49135	G
Enterococcus durans ATCC 49479	Gardnerella vaginalis ATCC 14018
Enterococcus durans ATCC 6056	Gardnerella vaginalis ATCC 49145
Enterococcus faecalis ATCC 19433	Gemella morbillorum ATCC 27824
Enterococcus faecalis ATCC 29212	Geobacillus stearothermophilus ATCC 10149
Enterococcus faecalis ATCC 49149	Geobacillus stearothermophilus ATCC 12978
Enterococcus faecalis ATCC 49452	Geobacillus stearothermophilus ATCC 12980
Enterococcus faecalis ATCC 51299	Geobacillus stearothermophilus ATCC 7953
Enterococcus faecalis ATCC 7080	Geomyces pannorum FNCC
Enterococcus faecalis ATCC 35667	Geotrichum candidum ATCC 34614
Enterococcus faecalis ATCC 51559	Geotrichum candidum ATCC 10663
Enterococcus faecalis ATCC 700221	Geotrichum candidum ATCC 28576
Enterococcus gallinarum ATCC 700425	Geotricum candidum FNCC
Enterococcus hirae ATCC 8043	Gordona rubropertinctus FNCC
Enterococcus raffinosus ATCC 49464	Gordona terrae FNCC
Enterococcus saccharolyticus ATCC 43076	H
Epidermophyton floccosum ATCC 52066	Haemophilus aphrophilus ATCC 19415
Erysipelothrix rhusiopathiae ATCC 19414	Haemophilus haemoglobinophilus ATCC 19416
Escherichia coli ATCC 10536	Haemophilus haemolyticus ATCC 33390
Escherichia coli ATCC 11229	Haemophilus influenzae ATCC 33930
Escherichia coli ATCC 11775	Haemophilus influenzae ATCC 35056
Escherichia coli ATCC 12014	Haemophilus influenzae ATCC 35540
Escherichia coli ATCC 13706	Haemophilus influenzae ATCC 49144
Escherichia coli ATCC 25992	Haemophilus influenzae ATCC 49247
Escherichia coli ATCC 29194	Haemophilus influenzae ATCC 49766
Escherichia coli ATCC 35218	Haemophilus influenzae ATCC 19418
Escherichia coli ATCC 35421	Haemophilus influenzae NCTC 8468
Escherichia coli ATCC 4157	Haemophilus influenzae Type a ATCC 9006
Escherichia coli ATCC 51446	Haemophilus influenzae Type b ATCC 10211
Escherichia coli ATCC 51755	Haemophilus influenzae Type b ATCC 33533
Escherichia coli ATCC 8739	Haemophilus influenzae Type c ATCC 9007
Esherichia coli FNCC	Haemophilus parahaemolyticus ATCC 10014
Eurotium amstelodami FNCC	Haemophilus parainfluenzae ATCC 7901
Eurotium chevalieri FNCC	Haemophilus paraphrophilus ATCC 49146
Eurotium rubrum FNCC	Haemophilus paraphrophilus ATCC 49917
Exiguobacterium aurantiacum ATCC 49676	I
Exophiala jeanselmei ATCC 10224	Issatchenkia orientalis ATCC 6258
F	K
Finegoldia magna ATCC 29328	Klebsiella pneumoniae C6
Fluoribacter bozemanae ATCC 33217	Klebsiella oxytoca ATCC 13182
Fluoribacter dumoffii ATCC 33279	Klebsiella oxytoca ATCC 43086
Fonsecaesa pedrosoi ATCC 28174	Klebsiella oxytoca ATCC 49131
Klebsiella oxytoca ATCC 700324	Listeria monocytogenes ATCC 7644
Klebsiella oxytoca ATCC 8724	Listeria monocytogenes ATCC 7646
Klebsiella pneumoniae subsp. Pneumoniae ATCC 10031	Listeria monocytogenes ATCC BAA-751
Klebsiella pneumoniae subsp. Pneumoniae ATCC 13882	Lysinibacillus sphaericus ATCC 4525
Klebsiella pneumoniae subsp. Pneumoniae ATCC 13883	M
Klebsiella pneumoniae subsp. Pneumoniae ATCC 27736	Malassezia furfur ATCC 14521
Klebsiella pneumoniae subsp. Pneumoniae ATCC 33495	Malassezia furfur ST 8036
Klebsiella pneumoniae subsp. Pneumoniae ATCC 35657	Microbacterium liquefaciens ATCC BAA-1819
Klebsiella pneumoniae subsp. Pneumoniae ATCC 700603	Microbacterium paraoxydans ATCC BAA-1818
Klebsiella pneumoniae subsp. Pneumoniae ATCC 9997	Microbacterium testaceum ATCC 15829
Klebsiella pneumoniae subsp. Pneumoniae ATCC BAA 1705	Micrococcus luteus ATCC 10240
Klebsiella pneumoniae subsp. Pneumoniae ATCC BAA 1706	Micrococcus luteus ATCC 4698
Kloeckera apiculata var. Apis ATCC 32857	Micrococcus luteus ATCC 49732
Kloeckera japonica ATCC 58370	Micrococcus lylae ATCC 27566
Kluyveromyces lactis FNCC	Micrococcus sp. ATCC 700405
Kluyveromyces marxianus FNCC	Microsporum canis ATCC 11621
Kluyveromyces thermotolerans FNCC	Monascus purpureus FNCC
Kockovaella thailandica FNCC	Moraxella catarrhalis ATCC 23246
Kocuria kristiane ATCC BAA-752	Moraxella catarrhalis ATCC 25238
Kocuria rhizophila ATCC 533	Moraxella catarrhalis ATCC 25240
Kocuria rhizophila ATCC 9341	Moraxella catarrhalis ATCC 49143
Kocuria rosea ATCC 186	Moraxella catarrhalis ATCC 8176
L	Moraxella osloensis ATCC 10973
Lactobacillus acidophilus ATCC 314	Moraxella osloensis ATCC 19976
Lactobacillus acidophilus ATCC 4356	Morganella morganii FNCC
Lactobacillus acidophillus FNCC	Morganella morganii subsp. morganii ATCC 25830
Lactobacillus brevis ATCC 8287	Mucor plumbeus FNCC
Lactobacillus brevis FNCC	Mucor racemosus FNCC
Lactobacillus bulgaricus FNCC	Myroides odoratus ATCC 4651
Lactobacillus casei ATCC 393	N
Lactobacillus casei FNCC	Neisseria gonorrhoeae ATCC 19424
Lactobacillus delbrueckii subsp. lactis ATCC 12315	Neisseria gonorrhoeae ATCC 31426
Lactobacillus delbrueckii subsp. delbrueckii FNCC	Neisseria gonorrhoeae ATCC 35541
Lactobacillus fermentum FNCC	Neisseria gonorrhoeae ATCC 43070
Lactobacillus gasseri ATCC 19992	Neisseria gonorrhoeae ATCC 49226
Lactobacillus paracasei subsp. paracasei ATCC BAA-52	Neisseria gonorrhoeae ATCC 49926
Lactobacillus plantarum ATCC 8014	Neisseria gonorrhoeae ATCC 49981
Lactobacillus plantarum FNCC	Neisseria gonorrhoeae ATCC 43069
Lactobacillus rhamnosus (Lactobacillus casei subsp. rhamnosus) FNCC	Neisseria lactamica ATCC 23970
Lactobacillus murinus FNCC	Neisseria lactamica ATCC 23971
Lactococcus lactis subsp. lactis FNCC	Neisseria lactamica ATCC 49142
Leclercia adecarboxylata ATCC 23216	Neisseria meningtidis serogroup C ATCC 13102
Leclercia adecarboxylata ATCC 700325	Neisseria meningtidis serogroup A ATCC 13077
Legionella pneumophila ATCC 33823	Neisseria meningtidis serogroup B ATCC 13090
Legionella pneumophila ATCC 33152	Neisseria meningtidis serogroup Y ATCC 35561
Leuconostoc mesenteroides ATCC 8293	Neisseria mucosa ATCC 19695
Leuconostoc mesenteroides subsp. mesenteroides FNCC	Neisseria perflava ATCC 14799
Lipomyces starkeyi FNCC	Neisseria sicca ATCC 29256
Listeria grayi ATCC 25401	Neisseria sicca ATCC 9913
Listeria innocua ATCC 33090	Neurospora sitophila FNCC
Listeria innocua VC 32293	Nigrospora oryzae FNCC
Nitrobacter winogradskyi FNCC	Propionibacterium acidiproprionici ATCC 25562
Nitrosomonas europaea FNCC	Propionibacterium acnes ATCC 11827
Nocardia asteroides CL 11014	Propionibacterium acnes ATCC 6919
Nocardia asteroides FNCC	Propionibacterium propionicus FNCC
Nocardia brasiliensis ATCC 19296	Proteus hauseri ATCC 13315
Nocardia brasiliensis ATCC 19297	Proteus mirabilis ATCC 12453
Nocardia erythropolis FNCC	Proteus mirabilis ATCC 25933
Nocardia farcinica ATCC 3308	Proteus mirabilis ATCC 29245
Nocardia farcinica FNCC	Proteus mirabilis ATCC 29906
O	Proteus mirabilis ATCC 35659
Ochrobactrum anthropi ATCC 49187	Proteus mirabilis ATCC 43071
Ochrobactrum anthropi ATCC 49687	Proteus mirabilis ATCC 7002
Ochrobactrum anthropi ATCC BAA-749	Proteus vulgaris ATCC 49132
Oligella ureolytica ATCC 43534	Proteus vulgaris ATCC 6380
Oligella urethralis ATCC 17960	Proteus vulgaris ATCC 8427
P	Prototheca wickerhamii ATCC 16529
Paenibacillus gordonae ATCC 29948	Providencia alcalifaciens ATCC 51902
Paenibacillus macerans ATCC 8509	Providencia stuartii ATCC 33672
Paenibacillus polymyxa ATCC 43865	Providencia stuartii ATCC 49809
Paenibacillus polymyxa ATCC 7070	Provotella melaninogenica ATCC 25845
Paenibacillus polymyxa ATCC 842	Pseudomonas aeruginosa ATCC 10145
Parabacteroides distasonis ATCC 8503	Pseudomonas aeruginosa ATCC 15442
Parabacteroides distasonis ATCC BAA-1295	Pseudomonas aeruginosa ATCC 17934
Parvimonas micra ATCC 33270	Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853
Pasteurella aerogenes ATCC 27883	Pseudomonas aeruginosa ATCC 35032
Pasteurella multocida subsp. multocida ATCC 43137	Pseudomonas aeruginosa ATCC 35422
Pediococcus acidilactici FNCC	Pseudomonas aeruginosa ATCC 9027
Pediococcus halophilus FNCC	Pseudomonas aeruginosa ATCC 9721
Pediococcus pentosaceus ATCC 33314	Pseudomonas aeruginosa ATCC BAA-1744
Pediococcus pentosaceus FNCC	Pseudomonas aeruginosa FNCC
Penicillium brasilianum FNCC	Pseudomonas cepacia FNCC
Penicillium cammembertii FNCC	Pseudomonas fluorescens ATCC 13525
Penicillium candidum FNCC	Pseudomonas fluorescens FNCC
Penicillium chrysogenum ATCC 10106	Pseudomonas putida ATCC 49128
Penicillium citrinum FNCC	Pseudomonas putida FNCC
Penicillium crustosum FNCC	Pseudomonas stutzeri ATCC 17588
Penicillium funiculosum FNCC	R
Penicillium glabrum FNCC	Ralstonia pickettii ATCC 49129
Penicillium oxalicum FNCC	Rhizomucor miehei FNCC
Penicillium pinophilum FNCC	Rhizomucor pusillus FNCC
Penicillium purpurogenum FNCC	Rhizopus microsporus FNCC
Penicillium roqueforti FNCC	Rhizopus oligosporus FNCC
Peptoniphilus asaccharolyticus ATCC 29743	Rhizopus oryzae FNCC
Peptostreptococcus anaerobius ATCC 27337	Rhizopus stolonifer ATCC 14037
Phialophora verrucosa ATCC 28181	Rhodococcus equi ATCC 6939
Pichia burtonii FNCC	Rhodococcus equi FNCC
Pichia guilliermondii FNCC	Rhodococcus erythropolis FNCC
Pichia ohmeri FNCC	Rhodococcus fascians FNCC
Plesiomonas shigelloides ATCC 14029	Rhodococcus rhodochrous FNCC
Plesiomonas shigelloides ATCC 51903	Rhodosporidium toruloides FNCC
Porphyromonas gingivalis ATCC 33277	Rhodotorula glutinis ATCC 32765
Porphyromonas levii ATCC 29147	Rhodotorula glutinis FNCC
S	Sphingobacterium multivorum ATCC 35656
Saccharomyces bayanus FNCC	Sphingobacterium spiritivorum ATCC 33861
Saccharomyces caribergensis FNCC	Sphingomonas paucimobilis FNCC
Saccharomyces cerevisiae ATCC 4098	Sporidiobolus salmonicolor ATCC MYA-4550
Saccharomyces cerevisiae ATCC 9763	Sporothrix schenckii ATCC 10212
Saccharomyces cerevisiae FNCC	Staphylococcus aureus ATCC 29737
Saccharomyces diastaticus FNCC	Staphylococcus aureus ATCC 35548
Saccharomyces kluyvery FNCC	Staphylococcus aureus ATCC 9144
Saccharomyces pastorianus FNCC	Staphylococcus aureus ATCC BAA-1026
Saccharomyces uvarum FNCC	Staphylococcus aureus ATCC BAA-1708
Saccharomycopsis fibuligera FNCC	Staphylococcus aureus FNCC
Salmonella choleraesuis subsp. choleraesuis FNCC	Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 35661
Salmonella enterica serovar Typhimurium ATCC 13311	Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 12600
Salmonella enterica subsp. enterica serovar Anatum ATCC 9270	Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 25178
Salmonella enterica subsp. enterica serovar Choleraesuis ATCC 10708	Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 25904
Salmonella enterica subsp. enterica serovar Enteritidis ATCC 13076	Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 33592
Salmonella enterica subsp. enterica serovar Montevideo ATCC 8387	Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 49444
Salmonella enterica subsp. enterica serovar Newport ATCC 6962	Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 49476
Salmonella enterica subsp. enterica serovar Paratyphi A ATCC 11511	Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 51153
Salmonella enterica subsp. enterica serovar Paratyphi B ATCC 8759	Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 6538P
Salmonella enterica subsp. enterica serovar Typhi ATCC 6539	Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 6538
Salmonella enterica subsp. enterica serovar Typhimurium ATCC 14028	Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC BAA-976
Salmonella enterica sv Poona NCTC 4840	Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC BAA-977
Salmonella FNCC	Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 25923
Salmonella sp. Not Typhi group D BF-SD	Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 29213
Salmonella sp. Serovar Abony NCTC 6017	Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 29247
Salmonella tranoroa NCTC 10252	Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 33591
Salmonella typhimurium FNCC	Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 33862
Schizosaccharomyces pombe FNCC	Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 43300
Scopulariopsis acremonium ATCC 58636	Staphylococcus epidermis ATCC 12228
Serovar typhimurium FNCC	Staphylococcus epidermis ATCC 14990
Serratia liquefaciens ATCC 27592	Staphylococcus epidermis ATCC 29887
Serratia marcescens ATCC 13880	Staphylococcus epidermis ATCC 49134
Serratia marcescens ATCC 14756	Staphylococcus epidermis ATCC 49461
Serratia marcescens ATCC 8100	Staphylococcus epidermis ATCC 700296
Serratia odorifera ATCC 33077	Staphylococcus epidermis FNCC
Shewanella putrefaciens ATCC 49138	Staphylococcus haemolyticus ATCC 29970
Shewanella putrefaciens ATCC 8071	Staphylococcus hominis ATCC 27844
Shigella sonei group D ATCC 11060	Staphylococcus lentus ATCC 700403
Shigella sonei group D ATCC 25931	Staphylococcus lugdunensis ATCC 700328
Shigella sonei group D ATCC 9290	Staphylococcus rafinolactis FNCC
Shigella boydii serovar 1 group C ATCC 9207	Staphylococcus saprophyticus ATCC 15305
Shigella dysenteriae group A ATCC 13313	Staphylococcus saprophyticus ATCC 35552
Shigella flexneri serovar 2b group B ATCC 12022	Staphylococcus saprophyticus ATCC 43867
Staphylococcus saprophyticus ATCC 49453	Streptococcus pneumoniae ATCC 6303
Staphylococcus saprophyticus ATCC 49907	Streptococcus pneumoniae ATCC 6305
Staphylococcus saprophyticus ATCC BAA-750	Streptococcus pneumoniae CL 811
Staphylococcus sciuri subsp. sciuri ATCC 29060	Streptococcus pyogenes ATCC 19615
Staphylococcus sciuri subsp. sciuri ATCC 29061	Streptococcus pyogenes group A ATCC 12384
Staphylococcus simulans ATCC 27851	Streptococcus pyogenes group A ATCC 21547
Staphylococcus thermophillus FNCC	Streptococcus salivarius serotype II ATCC 13419
Staphylococcus xylosus ATCC 29967	Streptococcus sanguinis Type 1 ATCC 10556
Staphylococcus xylosus ATCC 29971	Streptococcus sp. Gp D ATCC 9854
Staphylococcus xylosus ATCC 35663	Streptococcus sp. group B ATCC 12401
Staphylococcus xylosus ATCC 49148	Streptococcus sp. group D ATCC 27284
Staphylococcus xylosus ATCC 700404	Streptococcus sp. Type 2 group F ATCC 12392
Stenotrophomonas maltophilia ATCC 13637	Streptococcus thermophilus ATCC 19258
Stenotrophomonas maltophilia ATCC 17666	Streptococcus uberis ATCC 700407
Stenotrophomonas maltophilia ATCC 49130	Streptococcus uberis ATCC 9927
Stenotrophomonas maltophilia ATCC 51331	Streptomyces albus ATCC 17900
Streptococcus agalactiae group B ATCC 12386	Streptomyces griseus subsp. griseus ATCC 10137
Streptococcus agalactiae group B ATCC 13813	T
Streptococcus agalactiae group B CL 810	Tatlockia micdadei ATCC 33204
Streptomyces ambofaciens FNCC	Trichophyton equinum ATCC 12544
Streptococcus bovis ATCC 33317	Trichophyton mentagrophytes ATCC 9533
Streptococcus criceti ATCC 19642	Trichophyton robrum ATCC 28188
Streptococcus dysgalactiae subsp. equisimilis group G ATCC 12394	Trichophyton tonsurans ATCC 28942
Streptococcus dysgalactiae subsp. equisimilis ATCC 35666	Trichophyton verrucosum ATCC 42898
Streptococcus dysgalactiae subsp. equisimilis ATCC 9542	Trichophyton cultaneum ATCC 28592
Streptococcus dysgalactiae subsp. equisimilis group C ATCC 43079	Trichophyton mucoides ATCC 204094
Streptococcus equi subsp. zooepidemicus group C ATCC 700400	V
Streptococcus gallolyticus ATCC 49147	Veillonella parvula ATCC 10790
Streptococcus gallolyticus ATCC 9809	Veillonella parvula ATCC 17745
Streptococcus gallolyticus subsp. gallolyticus ATCC 49475	Vibrio cholerae serotype Inaba ATCC 9459
Streptococcus mutans ATCC 25175	Vibrio parahaemolyticus ATCC 17802
Streptococcus mutans ATCC 35668	Vibrio vulnificus ATCC 27562
Streptococcus oralis ATCC 35037	Virgibacillus pantothenticus ATCC 14576
Streptococcus oralis ATCC 9811	Y
Streptococcus pasteurianus ATCC 49133	Yarrowia lipolytica ATCC 9773
Streptococcus pneumoniae ATCC 27336	Yersinia enterocolitica ATCC 23715
Streptococcus pneumoniae ATCC 49136	Yersinia enterocolitica subsp. enterocolitica ATCC 9610
Streptococcus pneumoniae ATCC 49150	Yersinia kristensenii ATCC 33639
Streptococcus pneumoniae ATCC 49619	Z
Streptococcus pneumoniae ATCC 6301	Zygosaccharomyces bailii ATCC MYA-4549